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| SWD-Schlagwörter: |
| Cytokine , Cholesterin , Plasmamembran , Biomembran , Membran , Rezeptor-Tyrosinkinasen , STAT , P-STAT , Leukaemia-inhibitory factor |
| Freie Schlagwörter (Deutsch): |
| gp 130, lipid rafts, Detergenz-resistente Membranmikrodomänen , posttranslationale Modifikationen |
| Freie Schlagwörter (Englisch): |
| lipid rafts |
| Institut: |
| Institut für Biologische Chemie und Ernährungswissenschaft |
| Fakultät: |
| Fakultät Naturwissenschaften |
| DDC-Sachgruppe: |
| Biowissenschaften, Biologie |
| Dokumentart: |
| Dissertation |
| Hauptberichter: |
| Graeve, Lutz Prof. Dr. |
| Sprache: |
| Deutsch |
| Tag der mündlichen Prüfung: |
| 10.10.2008 |
| Erstellungsjahr: |
| 2008 |
| Publikationsdatum: |
| 02.12.2008 |
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| Lizenz: |
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Veröffentlichungsvertrag mit der Universitätsbibliothek Hohenheim ohne Print-on-Demand
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| Kurzfassung auf Deutsch: |
| Posttranslationale Modifikationen wie Glykosylierung oder Palmitoylierung, aber auch Wechselwirkungen mit anderen Proteinen können die Lokalisation von Rezeptoren innerhalb von Detergenz-unlöslichen Membrandomänen/ lipid rafts und somit die Signaltransduktion beeinflussen. In dieser Arbeit wurden die posttranslationalen Modifikationen von LIFR und gp130 und ihr Einfluss auf die Assoziation mit Detergenz-resistenten Membranmikrodomänen untersucht.
Palmitoylierung von Cysteinresten innerhalb der Transmembrandomäne eines Proteins kann die DRM-Assoziation beeinflussen. Da gp130 zwei Cysteinreste in der Transmembrandomäne enthält, wurde die Rolle dieser Cysteine für die DRM-Assoziation untersucht. Aus den Befunden kann zusammengefasst werden, dass die Cysteine C711 und C725 in der Transmembrandomäne von gp130 keinen signifikanten Einfluss auf die DRM-Assoziation haben. Nach der Isolierung der DRM mit Brij 58 und Triton X-100 wurde entgegen der Erwartungen sogar eine leichte Steigerung der DRM-Assoziation der C->A-Mutanten beobachtet.
Für LIFR konnte nach DRM-Isolierung mit Brij 58 und Triton X-100 eine partielle Assoziation mit den Detergenz-unlöslichen Membrandomänen bestätigt werden. Weiterhin wurden zwei unterschiedliche N-Glykosylierungsformen des Rezeptors nachgewiesen. Die Mannose-reiche (Vorläufer) Form tritt bevorzugt in der Detergenz-löslichen Fraktion auf und wird von dem Enzym Endo-Glykosidase Hf degradiert. Die hybride (reife) Form neigt zur stärkeren Assoziation mit den Detergenz-unlöslichen Mikrodomänen. Nur die reife LIFR-Form wird nach der Bindung von LIF an den Rezeptorkomplex in 3T3-L1- und HepG2-Zellen phosphoryliert, was in Verbindung mit anderen Ergebnissen unserer Arbeitsgruppe darauf hindeutet, dass nur die reife Form an der Zelloberfläche exprimiert wird und an der Signaltransduktion beteiligt ist.
In HepG2-Zellen wurde nach Stimulation mit LIF eine Erhöhung der LIFR-Phosphorylierung in Detergenz-unlöslichen Membranmikrodomänen (DRM) nachgewiesen. Phosphoryliertes gp130 wurde nach LIF-Gabe hingegen hauptsächlich in der nicht-DRM-Fraktion detektiert. Die Widersprüchlichkeit dieses Ergebnisses kann auf methodische Probleme zurückgeführt werden. Außerdem wurde in 3T3-L1-Zellen eine stärkere Phosphorylierung des LIFR in der DRM-Fraktion nicht bestätigt. In 3T3-L1 findet die Aktivierung von gp130 und LIFR in der gleichen Plasmamembrandomäne (nicht-DRM) statt. Das deutet einerseits auf zelluläre Unterschiede bezüglich Rezeptoraktivierung und Verteilung innerhalb der Plasmamembran, und andererseits auf unterschiedliche Sensitivität der lipid rafts gegenüber den verwendeten Detergenzien hin.
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| Kurzfassung auf Englisch: |
| Post-translational modification of proteins is an important event in the regulation of cellular functions. Glycosylation or palmitoylation, but also ligand binding can affect the localization of proteins in membrane microdomains and thus affect signal transduction. The aim of this study was to analyze how posttranslational modifications of LIFR and the common signal transducer gp130 impact the translocation to detergent resistant membranes (DRMs, lipid rafts).
Palmitoylation of cysteine residues within the transmembrane domain of a protein is considered to be one process that assists in the localization of proteins to DRMs. Gp130 has two cysteine residues C711 and C725 in its transmembrane domain. My studies indicate that these cysteine residues have no significant influence on lipid raft association of gp130. Contrary to our expectations, after isolation of DRMs with Brij 58 and Triton X-100 an increase of raft association of the C->A-mutants was detected.
Partial DRM association of LIFR was confirmed by using Brij 58 and Triton X-100 protocols. Furthermore, two different N-glycosylation types of that receptor could be detected. The mannose-rich (precursor) species is preferentially found in non-DRMs and is degraded by Endo-Glycosidase Hf. The hybrid-type (mature) tends towards an association with DRMs. My results indicate that only the mature-type of LIFR was phosphorylated after LIF binding to the receptor complex in 3T3-L1 and HepG2 cells. Combined with other data from our workgroup these findings suggest that only the mature-type of LIFR is expressed at the plasma membrane surface and involved in signal transduction.
After stimulation with LIF an increase of LIFR tyrosine phosphorylation was observed in DRMs in HepG2 cells. However, phosphorylation of gp130 was detected only in non-DRMs fractions after stimulation with LIF. The inconsistency of these results can be explained with methodical problems. Furthermore, the translocation of phosphorylated receptors described above could not confirmed in 3T3-L1 cells. In this cell line, the activation of gp130 and LIFR occurs in detergent-resistant membranes. These findings indicate differences between cell lines with respect to receptor activation and translocation within the plasma membrane on the one hand and demonstrate a differential sensitivity of raft subdomains to extraction by different detergents on the other hand.
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