Mobile signals in plant parasitism

Greifenhagen, Anne

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Greifenhagen, Anne

Mobile signals in plant parasitism

Mobile Signale des Pflanzenparasitismus

(Übersetzungstitel)

Bitte beziehen Sie sich beim Zitieren dieses Dokumentes immer auf folgende
URN: urn:nbn:de:bsz:100-opus-22829
URL: http://opus.uni-hohenheim.de/volltexte/2024/2282/

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SWD-Schlagwörter:

Parasitismus , Peptide , Subtilasen , Haustorium , Hypertrophie

Freie Schlagwörter (Englisch):

Orobanchaceae , peptide signaling , subtilase , precursor processing , molecular mimicry , cytokinin , haustorium , hypertrophy , neofunctionalization

Institut:

Institut für Biologie

Fakultät:

Fakultät Naturwissenschaften

DDC-Sachgruppe:

Pflanzen (Botanik)

Dokumentart:

Dissertation

Hauptberichter:

Schaller, Andreas Prof.

ISBN:

978-3-7369-7949-9

Sprache:

Englisch

Tag der mündlichen Prüfung:

12.01.2024

Erstellungsjahr:

2024

Publikationsdatum:

14.02.2024

Lizenz:

Veröffentlichungsvertrag mit der Universitätsbibliothek Hohenheim ohne Print-on-Demand

Kurzfassung auf Englisch:

Close to two percent of all flowering plants evolved parasitism, with some parasitic species, like Striga spp. from the Orobanchaceae family, posing a prevailing threat to crop yield. Parasitic weed management is challenging and requires a deeper understanding of the complex parasite-host relationship (Section 1.1).
Parasitic plants infect and parasitize host plants through a multicellular feeding organ, the haustorium. This organ may either develop from the root tip as a single terminal haustorium or emerge multiple times along the growing roots, called lateral haustoria. In both cases, protohaustoria develop into mature haustoria that enable the withdrawal of water and nutrients. Parasitism depends on parasite and host endogenous signaling but also on communication between both partners (Section 1.2). This is similar to the development of other plant organs like lateral roots and symbiotic nodules, whose number is adjusted by an autoregulation of nodulation (AON) system. The induction of parasitic organs by pathogenic nematodes, but in particular also by parasitic plants, involves the manipulation, neofunctionalization, and interspecific exchange of mobile signals (Section 1.3). However, most of these molecular cues remain elusive in the parasitic plant-host plant interaction. This work aimed to address the biogenesis and function of parasite-derived endogenous and interspecific mobile signals involved in early till late stages of parasitism in the model system Phtheirospermum japonicum infecting Arabidopsis thaliana (Section 1.4).
Transcriptome and genome studies on parasitic plants paved the way to unravel signaling cues contributing to parasitism. The evolution of parasitism correlates with the expansion of certain gene families followed by their parasitism-related neofunctionalization as seen for the KARRIKIN-INSENSITIVE 2 ‘divergent’-type (KAI2d) gene family in parasitic plants of the Orobanchaceae. Likewise, subtilisin-like serine protease (subtilase, SBT) genes in P. japonicum and Striga underwent an expansion, and some show haustorium tip-specific expression. The proteolytic activity of PjSBTs is required for proper haustorium formation and development. Despite their importance, no substrates of PjSBTs have been identified. In this work, PjSBT1.2.3 was found to be co-expressed with CLAVATA3(CLV)/EMBRYO-SURROUNDING REGION-related 3 (PjCLE3) during infection in the same domain of the haustorium. PjSBT1.2.3 cleaved PjCLE3 in vitro, thereby releasing the bioactive mature PjCLE3 peptide (Section 2.1, Fig.2.1.1). Sensing host-derived haustorium-inducing factors (HIFs) initiates haustorium organogenesis. In the absence of a host, the synthetic mature PjCLE3 induced protohaustorium formation similar to a host-derived benzoquinone HIF. Combined treatment of both HIFs potentiated their activity (Section 2.1, Fig.2.1.2). Pj cle3 knock-out hairy roots (HRs) formed fewer haustoria, particularly due to the absence of secondary protohaustoria (Section 2.1, Fig.2.1.3). These data demonstrate the existence of an autoregulation of haustoria formation (AOH) system as part of which the PjSBT1.2.3-PjCLE3 module, in analogy to AON, regulates the number of P. japonicum lateral haustoria. During the early stages of parasitism, the parasitism-related PjSBT1.2.3-PjCLE3 module promotes protohaustorium formation by sensitizing the parasite root for host-derived HIFs (Section 3.1). A homologous SBT-CLE module also exists in Striga, even though the parasite forms a terminal haustorium. Striga CLE2s are identical to host CLEs and this mimicry might improve nutrient allocations from the host during later stages of parasitism (Section 2.1, Fig.S2.1.2; Section 3.2).
Similarly, parasite-derived cytokinin (CK) translocates through the haustorium inducing host hypertrophy, a swelling of host tissue above the infection site, thereby potentially benefiting parasite nutrient acquisition. In agrobacteria and plants, isopentenyltransferases (IPTs) synthesize CK precursors. Similar to SBTs and KAI2ds from parasitic plants, P. japonicum and S. hermonthica IPT1 genes exist as multiple copies, with one copy, PjIPT1a showing specific expression at the tip of haustoria (Section 2.2, Fig.2.2.1, Fig.2.2.2). Bioinformatic tools predicted a chloroplast transit peptide (CTP) for PjIPT1s, but PjIPT1-GFP fusions localized to cytoplasm and nucleus suggesting the CTP to be non-functional (Section 2.2, Fig.2.2.2, Fig.S2.2.2). To test substrate specificity and activity of both PjIPT1 copies, isoprenylation-activity was probed in vitro. PjIPT1b used both AMP and ATP as substrates, whereas PjIPT1a displayed a higher affinity for AMP, indicating that PjIPT1b may be the canonical, whereas PjIPT1a is the parasitism-related IPT (Section 2.2, Fig.2.2.4). This is further supported by the observation that CRISPR/Cas9-mediated mutation of PjIPT1a abolishes CK responses in the infected host (Section 3.3, Section 2.2, Fig.2.2.3). SBT-CLE, IPT-CK together with KAI2ds all have in common that their parasitism-related function may evolutionally result from gene duplication combined with neofunctionalization. Targeting duplicated and neofunctionalized genes may prove to be a promising strategy to combat parasitic weeds. (Sections 3.4, 3.5).

Kurzfassung auf Deutsch:

Etwa zwei Prozent aller Blütenpflanzen entwickelten evolutiv die Fähigkeit, andere Pflanzen zu parasitieren. Einige Spezies, wie Striga spp. aus der Familie der Orobanchaceae, befallen dabei Nutzpflanzen und führen zu erheblichen Ertragsverlusten. Die Bekämpfung parasitärer Unkräuter ist schwierig, könnte jedoch durch ein tieferes Verständnis der Interaktion zwischen Parasit und Wirt verbessert werden (Section 1.1).
Mit Hilfe eines multizellulären Infektionsorgans, des Haustoriums, dringt die parasitäre Pflanze in den Wirt ein. Dieses Organ kann sich entweder aus der Wurzelspitze als einzelnes terminales Haustorium bilden oder an mehreren Stellen entlang der wachsenden Wurzeln als laterale Haustorien entstehen. In beiden Fällen entwickeln sich Protohaustorien zu reifen Haustorien, welche Wasser und Nährstoffe gewinnen. Der Parasitismus basiert auf endogenen Parasiten- und Wirtssignalwegen, aber auch auf der Kommunikation zwischen beiden Partnern (Section 1.2). Ähnlich verhält es sich bei der Entwicklung anderer Pflanzenorgane wie Seitenwurzeln und symbiotischen Wurzelknöllchen, deren Anzahl durch ein System zur Autoregulation der Knöllchenbildung (AON) gesteuert wird. Vor allem Nematoden induzieren parasitäre Wurzelgallen und -zysten, wie auch parasitäre Pflanzen Haustorien, indem sie mobile Signale manipulieren, umfunktionalisieren und zwischen Parasiten- und Wirtsspezies (interspezifisch) austauschen (Section 1.3). Viele dieser für die Interaktion zwischen parasitärer Pflanze und Wirtspflanze wichtigen mobilen Signale sind allerdings unbekannt. Ziel dieser Arbeit war es, die Biogenese und Funktion parasitärer endogener und interspezifischer Signale in frühen bis späten Stadien des Parasitismus von Phtheirospermum japonicum auf Arabidopsis thaliana aufzuklären (Section 1.4).
Transkriptom- und Genomstudien ebneten den Weg molekulare Signale, welche für den Parasitismus bedeutsam sind, einzuordnen. Die Evolution des Parasitismus geht einher mit der Expansion bestimmter Genfamilien gefolgt von deren Umfunktionalisierung wie beispielsweise die KARRIKIN-INSENSITIVE 2 ‘divergent’-type (KAI2d) Genfamilie der Orobanchaceae. Ähnlich verhält es sich bei der Genfamilie der Subtilisin-artigen Serinproteasen (SBTs) in P. japonicum and Striga, welche dupliziert und teils speziell in den Haustoriumspitzen exprimiert sind. Obwohl PjSBTs bei der Haustorienbildung unabdingbar sind, blieben potentielle Substrate unbekannt. In dieser Arbeit wurde gezeigt, dass PjSBT1.2.3 mit CLAVATA3/EMBRYO-SURROUNDING REGION-related 3 (PjCLE3) im selben Bereich des Haustoriums co exprimierte. PjSBT1.2.3 spaltete PjCLE3 in vitro, was zur Freisetzung des reifen Peptids führte (Section 2.1, Fig.2.1.1). Das Wahrnehmen Haustorium-induzierender Faktoren (HIFs) initiiert die Haustorienbildung. In Abwesenheit eines Wirtes induzierte das synthetische reife PjCLE3 die Protohaustorienbildung, ähnlich der Wirkung des HIF Benzochinon. Eine kombinierte Behandlung mit beiden HIFs steigerte deren Aktivität (Section 2.1, Fig.2.1.2). Pj cle3 knock-out Haarwurzeln (HR) bildeten weniger Haustorien, zurückzuführen auf die Abwesenheit sekundärer Protohaustorien (Section 2.1, Fig.2.1.3). Folglich könnte das PjSBT1.2.3-PjCLE3 Modul Teil eines Systems zur Autoregulation der Haustorienbildung (AOH), in Analogie zur AON, sein, welches die Bildung lateraler Haustorien in P. japonicum steuert. Während früher Stadien des Parasitismus fördert das Parasitismus-spezifische PjSBT1.2.3-PjCLE3 Modul die Protohaustorienbildung, indem es die Parasitenwurzel für Wirts-HIFs sensibilisiert (Section 3.1). Ein homologes SBT-CLE Modul ist auch in Striga aktiv, obwohl der Parasit zuerst nur ein terminales Haustorium bildet. Striga CLE2s sind identisch zu Wirts-CLEs und diese Mimikry könnte den Fluss von Nährstoffen vom Wirt hin zum Parasiten während späterer Stadien des Parasitismus verbessern (Section 3.2, Section 2.1, Fig.S2.1.2).
Ähnlich wandert vom Parasiten stammendes Cytokinin (CK) durch das Haustorium und führt im Wirt zu Hypertrophie, wodurch der Parasit möglicherweise seine Nährstoffgewinnung verbessert. Agrobakterien und Pflanzen synthetisieren CK-Vorstufen durch Isopentenyltransferasen (IPTs). Genau wie SBTs und KAI2ds parasitärer Pflanzen, sind P. japonicum and S. hermonthica IPT1s dupliziert und nur eine Genkopie, PjIPT1a, ist speziell in der Haustorienspitze exprimiert (Section 2.2, Fig.2.2.1, Fig.2.2.2). Bioinformatische Tools sagten Chloroplastentransitpeptide (CTPs) für PjIPT1s vorher, aber PjIPT1-GFP Fusionsproteine waren im Zytoplasma und Nukleus lokalisiert, was auf nicht-funktionale CTPs schließen lässt (Section 2.2, Fig.2.2.2, Fig.S2.2.2). Um die Substratspezifität und Aktivität der beiden PjIPT1-Kopien zu untersuchen, wurden in vitro Tests der Isoprenylierungsaktivität vorgenommen. Diese zeigten, dass PjIPT1b AMP and ATP als Substrate nutzte, während PjIPT1a AMP bevorzugte, was wiederum darauf hindeutet, dass PjIPT1b das ursprüngliche und PjIPT1a das Parasitismus-spezifische IPT sein könnte (Section 2.2, Fig.2.2.4). Diese Vermutung wird dadurch gestützt, dass durch CRISPR/Cas9 erzeugte Mutationen im PjIPT1a Gen die CK-Antwort im Wirt während der Infektion annullierten (Section 3.3, Section 2.2, Fig.2.2.3). SBT-CLE, IPT-CK und KAI2ds ist gemein, dass ihre Parasitismus-spezifische Funktion evolutiv aus Genduplikationen gefolgt von Umfunktionalisierung resultiert. Die gezielte Untersuchung duplizierter und umfunktionalisierter Gene ist möglicherweise eine vielversprechende Strategie im Kampf gegen parasitäre Unkräuter. (Sections 3.4, 3.5).